這篇我們要學習的是美國俄勒岡州衛(wèi)生科學大學的Andrew Adey課題組開發(fā)的新型單細胞測序技術(shù)，SCI-seq,如何不需要用微流控和液滴分選就可以實現(xiàn)單細胞測序?這種新型的單細胞測序技術(shù)有何優(yōu)勢？
說起這種新的單細胞測序技術(shù)，首先需要談到Tn5插入的index方法，什么意思那？
Tn5是一種轉(zhuǎn)座酶，可以將DNA片段插入到基因組中，因此可以利用Tn5，將想要的序列插入到基因組，并且可以將基因組打斷成相應(yīng)的片段，并且在末端鏈接上想要的序列，如果我們在末端鏈接的序列上，使用不同的序列，因此便可以進行復雜的組合建庫微流控。
那什么叫復雜建庫那？
復雜建庫的方法就是將PCR index引入的時候，和Tn5 index引入的時候，進行組合，從而最終可以形成數(shù)十萬種不同的index，而每一個細胞將會得到唯一的index，這也就是復雜建庫的精髓所在。
那么如何將復雜建庫應(yīng)用在單細胞測序上哪？
其實兩年前，便有科學家們著手這方面的研究，通訊作者Jay也就是本期單細胞微流控HiC的通訊作者。
上圖也就是復雜建庫方法的精髓所在，首先將細胞用FACS分選到96孔板中，讓每個孔有25個左右的細胞，然后不同孔之間使用不同的Tn5對應(yīng)的index，進行插入整合。這個時候，每個孔內(nèi)細胞的index是一樣的，而且細胞是完整的微流控。
然后再對細胞進行混合和重新分配，然后這樣，在新的96孔板里面，每個細胞的index是不一樣的，然后對每一個孔，裂解，加上PCR對應(yīng)的index，這樣就保證了每個細胞的index的唯一性微流控。
理解了這種index的復雜建庫方法進行單細胞測序后，Jay在2014年這篇Science中開展的就是ATAC-seq，事實上，轉(zhuǎn)座酶對染色體的插入并非均一的，而是插入在活性區(qū)域，這樣便可以進行活性區(qū)域的判斷。
然而，如果是想要單細胞DNA測序的話，這個便成了劣勢，顯然，如果有些區(qū)域無法插入，進而就無法建庫，那么無法進行DNA覆蓋。
因此科學家們構(gòu)思了一個非常巧妙的方法，第一種方案是通過鋰輔助的核小體去除的方法，第二種是通過SDS然后歐聯(lián)的方法。
通過這兩種方法，可以看到在上圖中，仍然保持細胞核的完整性。
然后用復雜建庫的方法，進行測序，這個時候就可以獲得更加平均插入的Tn5，index。
從這張圖可以看到與標準的進行比對，LAND和xSDS兩種方法，可以具有更加均衡的插入建庫。
既然獲得了這種方法，下面需要做的便是評價方法的適用情況，是否可以進行有效的基因組建庫？與其他方法相比如何？
首先科學家們對測序的序列，進行分析，可以看到所有的細胞中，明顯的分為兩類，一類是具有重復序列很少，質(zhì)量比較高，一類重復序列很多。顯然前者更適合用于最終的數(shù)據(jù)分析。
那么是否真的是單細胞分析那？
科學家們將小鼠和人的細胞進行混合，這樣，如果最終測到的細胞有小鼠和人細胞混合的reads，那么提示并非真正的單細胞。不過這一類數(shù)據(jù)很少，提示確實是微流控單細胞數(shù)據(jù)。
那么測序數(shù)據(jù)的覆蓋度如何那？
MAD和MAPD可以用于評價不同測序方法覆蓋度的水平，分數(shù)越低越好，可以看到在兩種評價標準中LAND都比xSDS差。
SCI-seq最顯著的應(yīng)用便是用于基因組拷貝數(shù)情況的分析：
首先針對于不同核型的細胞，科學家們對不同的方法進行分析：
可以看到過濾后的數(shù)據(jù)而言，xSDS已經(jīng)和DOP和QRP相差無幾。
最終科學家們將這種微流控方法，應(yīng)用于恒河猴的大腦染色體拷貝數(shù)分析，和癌癥單細胞拷貝數(shù)分析：
可以預見在不遠的將來單細胞測序的費用越來越低，將成為人們解析更高層次的生命活動的基本手段。
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